patogen
krymsko-Kongijska febra krwotoczna (Cchf) jest wirusową infekcją opisaną w częściach Afryki, Azji, południowo-wschodniej Europy i Bliskiego Wschodu. Czynnik sprawczy, wirus CCHF, należy do rodzaju Nairovirus z rodziny Bunyaviridae. Powoduje ciężkie choroby u ludzi z ryzykiem przeniesienia szpitalnego i wysokim wskaźnikiem śmiertelności. Występowanie choroby jest związane z geograficznym rozmieszczeniem twardych wektorów kleszczowych, głównie z rodzaju Hyalomma. Nazwa wirusa związana jest z klinicznym rozpoznaniem choroby na Krymie w 1944 roku i pierwszą izolacją wirusa w Kongo w 1956 roku. Zasięg geograficzny wirusa CCHF jest znany jako najszerszy z wirusów przenoszonych przez Tiki, istotnych dla zdrowia człowieka. W Europie odnotowano przypadki w Albanii, Bułgarii, Kosowie, Turcji i byłym Związku Radzieckim. W Grecji pierwszy przypadek zakażenia CCHF u ludzi zgłoszono latem 2008 r. Pierwszy przypadek zakażenia CCHF u ludzi odnotowano w Grecji w czerwcu 2008 r. W Hiszpanii pierwszy przypadek zakażenia CCHF u ludzi zgłoszono w sierpniu 2016 r., co doprowadziło do zakażenia szpitalnego.
cechy kliniczne i następstwa
po okresie inkubacji, zwykle trwającym 3-7 dni (od 1 do 13 dni), choroba charakteryzuje się nagłym początkiem choroby gorączkowej z bólem głowy, bólem mięśni, bólem pleców, bólem stawów i brzucha oraz wymiotami. Często towarzyszą temu krwotoczne objawy, które mogą wahać się od wybroczyn do wybroczyn pojawiających się na błonach śluzowych i skórze; najczęstsze miejsca krwawienia to nos, układ pokarmowy, macica oraz drogi moczowe i oddechowe. Może wystąpić martwicze zapalenie wątroby. Duże wybroczyny i niekontrolowane krwawienie z miejsc wkłucia dożylnego są typowymi cechami. Okres rekonwalescencji rozpoczyna się u osób, które przeżyły około 10-20 dni po wystąpieniu choroby. Długość okresu inkubacji różni się w zależności od kilku czynników, w tym dawki wirusa i drogi narażenia, i jest często krótsza po zakażeniu szpitalnym.
przenoszenie
wirus gorączki krwotocznej krymsko-kongijskiej krąży w cichym cyklu enzootycznym kleszcz-kręgowiec-kleszcz i nie ma dowodów na to, że wirus wywołuje u zwierząt jakiekolwiek choroby. Kleszcze z rodzaju Hyalomma są głównymi wektorami wirusa CCHF; Hyalomma marginatum jest głównym wektorem CCHF w południowej Europie; wirus został również zidentyfikowany w Hyalomma lusitanicum w Hiszpanii. Zające i jeże działają jako gospodarze wzmacniające niedojrzałe stadia kleszczy. Zwierzęta domowe (bydło, kozy, owce itp.) są zwykłymi gospodarzami dla dorosłych kleszczy. Ludzie nie są preferowanymi gospodarzami kleszczy Hyalomma i są rzadko ugryzieni w porównaniu do zwierząt gospodarskich. Po zakażeniu kleszcze mogą przenosić wirusa CCHF przez całe życie. Na półkuli północnej Hyalomma marginatum jest zwykle aktywowana przez wzrost temperatury wiosną (początek kwietnia), a stadium niedojrzałe są aktywne latem od maja do września.
tryb transmisji
ludzie zarażają się przez ukąszenia zakażonych kleszczy lub przez kontakt z zakażoną krwią lub inną tkanką zwierzęcą. Przenoszenie szpitalne może nastąpić poprzez bezpośredni kontakt z zakażoną krwią lub płynami ustrojowymi lub poprzez skażony sprzęt medyczny lub zaopatrzenie.
grupy ryzyka
główne grupy ryzyka obejmują rolników, lekarzy weterynarii i pracowników rzeźni na obszarach endemicznych, a większość dotkniętych przypadków dotyczy rolnictwa i/lub hodowli zwierząt domowych oraz uboju. Samo mięso nie jest źródłem infekcji, ponieważ wirus jest inaktywowany przez zakwaszenie tkanki po uboju, a wirus CCHF nie przeżywa gotowania. Pracownicy służby zdrowia są drugą najbardziej dotkniętą grupą pacjentów karmiących pacjentów z cchf z ciężkimi krwawieniami i krwotokami w warunkach szpitalnych bez ścisłych procedur opieki barierowej. Aktywność na świeżym powietrzu na obszarach endemicznych jest czynnikiem ryzyka narażenia na kleszcze.
metody zapobiegania
zapobieganie i zwalczanie zakażenia CCHF osiąga się poprzez unikanie lub minimalizowanie ekspozycji na zakażone kleszcze za pomocą środków odstraszających kleszcze. Zaleca się noszenie odzieży ochronnej oraz wczesne i prawidłowe usuwanie kleszczy. Ponieważ szpitalne przypadki CCHF są dość powszechne i często prowadzą do wysokiej śmiertelności, w przypadku hospitalizowanych przypadków, podobnie jak w przypadku innych gorączek krwotocznych, należy podjąć ścisłe uniwersalne środki ostrożności, w tym Pielęgniarstwo barierowe. Szczepionka pochodząca z inaktywowanego mózgu myszy jest stosowana w Bułgarii, ale nie jest powszechnie dostępna, a skuteczność i bezpieczeństwo muszą być ponownie ocenione, a także specyficzna immunoglobulina ludzka stosowana w profilaktyce po ekspozycji. Na obszarach endemicznych środek zwalczania kleszczy osiągnięto poprzez sanityzację środowiskową siedlisk podleśnych. Akarycydy mogą być użyteczne u zwierząt domowych do zwalczania kleszczy zakażonych wirusem CCHF, jeśli są stosowane 10-14 dni przed ubojem lub do wywozu zwierząt z regionów enzootycznych.
diagnoza
bezpośrednia diagnoza CCHF odbywa się poprzez wykrycie genomu wirusa przez RT-PCR do 10-15 dni po rozpoczęciu choroby. Serologiczne wykrywanie swoistych przeciwciał IgM można wykonać począwszy od piątego dnia. Krymsko-Kongijska gorączka krwotoczna serokonwersja IgG lub czterokrotny wzrost miana może pomóc w diagnozie, ale jest opóźniona. Ponieważ CCHF jest uważany za wysoce niebezpieczny patogen, przesyłanie i obchodzenie się z próbkami wymaga specjalnych protokołów.
postępowanie i leczenie
ponieważ nie ma zwalidowanej specyficznej terapii przeciwwirusowej CCHF, leczenie opiera się na leczeniu wspomagającym, obejmującym podawanie trombocytów, świeżo mrożonego osocza i preparatów erytrocytów. Rybawirynę podawano doustnie lub dożylnie, jednak bez potwierdzonych korzyści. Należy ponownie ocenić wartość immunoglobulin ludzkich u odzyskanych pacjentów.
kluczowe obszary niepewności
zrozumienie cyklu przenoszenia wirusa CCHF wymaga dalszych badań terenowych, zwłaszcza w Europie. Brakuje standaryzacji definicji przypadków, procedur diagnostyki laboratoryjnej, zgłaszania i dokumentacji choroby. Leczenie rybawiryną jest zalecane przez Światową Organizację Zdrowia, ale podczas gdy wiele doniesień wskazuje, że lek może być korzystny, prawdziwa skuteczność wymagałaby dodatkowej oceny. Nie ma bezpiecznej i skutecznej szczepionki dla ludzi i nie istnieje model zwierzęcy do testowania nowych leków i / lub szczepionek.
Uwaga: informacje zawarte w niniejszym arkuszu są przeznaczone do celów ogólnych i nie powinny być wykorzystywane jako substytut indywidualnej wiedzy specjalistycznej i oceny pracowników służby zdrowia.
Burt FJ, Leman PA, Smith JF, Swanepoel R. zastosowanie reakcji łańcuchowej odwrotnej transkrypcji-polimerazy do wykrywania wirusowego kwasu nukleinowego w diagnostyce gorączki krwotocznej krymsko-kongijskiej. J Virol Methods 1998;70(2):129-37.
Drosten C, Minnak D, Emmerich P, Schmitz H, Reinicke T. krymsko-Kongijska gorączka krwotoczna w Kosowie. J Clin Microbiol 2002;40(3):1122-3.
Duh D, Saksida A, Petrovec m et al. Wiremia jako predyktor wyniku gorączki krwotocznej krymsko-kongijskiej. Emerg Infect Dis 2007;13(11):1769-72.
Ergonul O. leczenie krwotoków krymsko-kongijskich. Przeciwwirusowe Res 2007.
Ergonul O, Whitehouse CA, eds. Krymsko-Kongijska gorączka krwotoczna: perspektywa globalna. Dordrecht: Springer; 2007.
Estrada-Pena a, Zatansever Z, Gargili A et al. Modelowanie przestrzennego rozkładu ognisk gorączki krwotocznej krymsko-kongijskiej w Turcji. Vector Borne Zoonotic Dis 2007;7 (4): 667-78.
Hoogstraal H. the epidemiology of tick-Born krymsko-Kongo hemorrhagic fever in Asia, Europe, and Africa. J Med Entomol 1979;15 (4): 307-417.
Huggins jw. Perspektywy leczenia wirusowej gorączki krwotocznej rybawiryną, lekiem przeciwwirusowym o szerokim spektrum działania. Rev Infect Dis 1989;11 Suppl 4: S750-61.
Palomar AM al. Krymsko-kongijski wirus gorączki krwotocznej u kleszczy, południowo-zachodnia Europa, 2010. Emerg Infect Dis 2012, 18,1
Papa a, Christova I, Papadimitriou E, Antoniadis A. krymsko-Kongijska gorączka krwotoczna w Bułgarii. Emerg Infect Dis 2004;10(8):1465-7.
Papa a, Maltezou H, Tsiodras S, Dalla V, Papadimitriou T, Pierroutsakos I, Kartalis G, Antoniadis A. a case of Crimean-Congo haemorrhagic fever in Greece, June 2008. Euro Surveill. 2008 Aug 14; 13 (33) / align = „left” / 18952
Swanepoel R, Gill DE, Shepherd AJ, Leman PA, Mynhardt JH, Harvey S. the clinical pathology of Crimean-Congo hemorrhagic fever. Rev Infect Dis 1989;11 Suppl 4: S794-800.
Krymsko-Kongijska gorączka krwotoczna. Antiviral res 2004;64(3):145-60.