Patogen
Krim-Kongo hemoragisk feber (CCHF) er en virusinfeksjon beskrevet i deler Av Afrika, Asia, sørøst-Europa Og Midtøsten. Kausjonsmiddelet, CCHF-virus, tilhører slekten Nairovirus Av Bunyaviridae-familien. Det forårsaker alvorlig sykdom hos mennesker med risiko for nosokomial overføring og høy dødelighet. Forekomsten av sykdommen er knyttet til den geografiske fordeling av harde flåttvektorer, hovedsakelig Fra Hyalomma slekten. Navnet på viruset er knyttet til den kliniske anerkjennelsen Av Sykdommen Til Krim i 1944 og den første isoleringen av viruset I Kongo i 1956. Det geografiske spekteret AV CCHF-virus er kjent for å være det mest omfattende av de tickborne virusene som er relevante for menneskers helse. I Europa er det rapportert tilfeller I Albania, Bulgaria, Kosovo, Tyrkia og det tidligere Sovjetunionen. I Hellas ble det første menneskelige tilfellet AV CCHF-infeksjon rapportert sommeren 2008. Det første menneskelige tilfellet AV CCHF-infeksjon ble rapportert i Hellas i juni 2008. I Spania ble det første menneskelige tilfellet AV CCHF-infeksjon rapportert i August 2016 og resulterte i et nosokomial infeksjonstilfelle.
Kliniske trekk og følger
etter en inkubasjonsperiode, vanligvis på 3-7 dager (fra 1 til 13 dager), er sykdommen karakterisert ved plutselig innsettende febersykdom med hodepine, myalgi, ryggsmerter, ledd-og magesmerter og oppkast. Dette følges ofte av hemorragiske manifestasjoner som kan variere fra petechiae til ekkymoser som vises på slimhinner og hud; de vanligste blødningsstedene er nesen, mage-tarmsystemet, livmoren og urin-og luftveiene. Nekrotisk hepatitt kan forekomme. Stor ekkymose og ukontrollert blødning fra venepunksjonssteder er vanlige trekk. Rekonvalesentperioden begynner hos overlevende ca 10-20 dager etter sykdomsutbrudd. Lengden på inkubasjonsperioden varierer avhengig av flere faktorer, inkludert viral dose og eksponeringsvei, og er ofte kortere etter nosokomial infeksjon.
Overføring
Reservoar
Hemoragisk febervirus fra Krim-Kongo sirkulerer i en stille enzootisk tick-vertebrate-tick-syklus, og det er ingen bevis for at viruset forårsaker sykdom hos dyr. Flått fra Hyalomma slekten er de viktigste vektorer AV cchf virus; Hyalomma marginatum er den viktigste vektoren FOR CCHF i sør-Europa; viruset har også blitt identifisert I Hyalomma lusitanicum I Spania. Harer og pinnsvin fungerer som forsterkende verter for de umodne stadiene av flåttene. Husdyr (storfe, geiter, sauer, etc.) er de vanlige vertene for de voksne flåttene. Mennesker er ikke de foretrukne vertene Av Hyalomma flått og blir sjelden bitt i forhold til husdyr. Når smittet, kan flått overføre CCHF-virus gjennom hele livet. På den nordlige halvkule aktiveres Hyalomma marginatum vanligvis av den økende temperaturen om våren (begynnelsen av April), og de umodne stadiene er aktive om sommeren Mellom Mai og September.
Overføringsmodus
Mennesker blir smittet gjennom biter av infiserte flått eller ved kontakt med infisert blod eller annet husdyr vev. Nosokomial overføring kan skje gjennom direkte kontakt med infisert blod eller kroppsvæsker, eller gjennom forurenset medisinsk utstyr eller forsyning.
risikogrupper
Store risikogrupper omfatter bønder, veterinærer og slakteriarbeidere i endemiske områder, og de fleste av de berørte sakene omhandler jordbruk og/eller husdyrhold og slaktevirksomhet. Kjøtt i seg selv er ikke smittekilden fordi viruset er inaktivert ved surgjøring av vevet etter slakting, OG CCHF-viruset overlever ikke matlaging. Helsepersonell er den nest mest berørte gruppen når de ammer CCHF-pasienter med alvorlig blødning og blødninger i en sykehusinnstilling uten strenge barrierepleieprosedyrer. Utendørsaktiviteter i endemiske områder er en risikofaktor for flåtteksponering.
Forebyggingsmetoder
Forebygging og kontroll av cchf-infeksjon oppnås ved å unngå eller minimere eksponering for infiserte flått ved bruk av flåttmiddel. Bruk av verneklær og tidlig og korrekt fjerning av flått anbefales. Siden nosokomiale TILFELLER AV CCHF er ganske vanlige og ofte resulterer i høy dødelighet, bør strenge universelle forholdsregler, inkludert barrierepleie, tas ved sykehusinnlagte tilfeller, som ved andre hemoragiske feber. En vaksine fra inaktivert musehjerne brukes i Bulgaria, men er ikke allment tilgjengelig, og effektivitet og sikkerhet må revurderes, samt spesifikt humant immunglobulin som brukes til posteksponeringsprofylakse. I endemiske områder er det oppnådd et mål for krysskontroll ved miljøhygiene av underbrush-habitater. Akaricider kan være nyttige på husdyr for å kontrollere CCHF-virusinfiserte flått hvis de brukes 10-14 dager før slakting eller til eksport av dyr fra enzootiske regioner.
Diagnose
Direkte diagnose AV CCHF gjøres ved påvisning av virusgenom VED RT-PCR opptil 10-15 dager etter sykdomsstart. Serologisk deteksjon av Spesifikke IgM-antistoffer kan gjøres fra dag fem. Krim-Kongo hemoragisk feber IgG Serokonversjon eller fire ganger titer økning kan hjelpe diagnosen, men det er forsinket. SIDEN CCHF regnes som et svært farlig patogen, krever prøveforsendelse og håndtering spesifikke protokoller.
Behandling og behandling
siden det ikke foreligger validert spesifikk antiviral behandling for CCHF, er behandlingen avhengig av støttende behandling, inkludert administrering av trombocytter, fersk frosset plasma og erytrocytpreparater. Oral eller intravenøs ribavirin har blitt brukt med rapportert suksess, men uten bekreftet nytte. Verdien av humane immunglobuliner fra gjenvunnede pasienter for behandling må revurderes.
nøkkelområder av usikkerhet
forståelsen av syklusen AV cchf-virusoverføring trenger ytterligere feltundersøkelser, spesielt i Europa. Det mangler standardisering av kasusdefinisjoner, laboratoriediagnostikk, rapportering og dokumentasjon av sykdommen. Behandling med ribavirin anbefales Av Verdens Helseorganisasjon, men mens mange rapporter indikerer at stoffet kan være gunstig, vil den virkelige effekten kreve ytterligere evaluering. Det finnes ingen sikker og effektiv human vaksine tilgjengelig, og det finnes ingen dyremodell for å teste nye legemidler og / eller vaksiner.
merk: informasjonen i dette faktaarket er ment for generell informasjon og bør ikke brukes som en erstatning for den individuelle ekspertisen og vurderingen til helsepersonell.
Burt FJ, Leman PA, Smith JF, Swanepoel R. bruken av en revers transkripsjon-polymerasekjedereaksjon for påvisning av viral nukleinsyre i diagnosen Krim-Kongo hemorragisk feber. J Virol Metoder 1998;70(2):129-37.
Drosten C, Minnak D, Emmerich P, Schmitz H, Reinicke T. Krim-Kongo hemoragisk feber I Kosovo. J Clin Mikrobiol 2002; 40 (3): 1122-3.
Duh D, Saksida A, Petrovec M et al. Viral belastning som prediktor For Krim-Kongo hemoragisk feber utfall. Emerg Infisere Dette 2007; 13 (11): 1769-72.
Ergonul O. Behandling Av Krim-Kongo hemorragiskfeber. Antiviral Res 2007.
Ergonul O, Whitehouse CA, red. Krim-Kongo hemorragisk feber: et globalt perspektiv. Dordrecht: Springer; 2007.
Estrada-Pena A, Zatansever Z, Gargili A et al. Modellering av romlig fordeling Av Krim-Kongo hemoragisk feber utbrudd I Tyrkia. Vektor Båret Zoonotisk Dis 2007; 7 (4): 667-78.
Hoogstraal H. epidemiologi av tick-borne Krim-Kongo hemoragisk feber I Asia, Europa og Afrika. J Med Entomol 1979; 15 (4): 307-417.
Huggins JW. Utsikter for behandling av virale hemorragiske feber med ribavirin, et bredspektret antiviralt stoff. Rev Infisere Dis 1989; 11 Suppl 4: S750-61.
Palomar er al. Krim-Kongo Hemorragisk Febervirus i Flått, Sørvestlige Europa, 2010. Emerg Infisere Dis 2012, 18,1
Papa A, Christova jeg, Papadimitriou E, Antoniadis A. Krim-Kongo hemoragisk feber I Bulgaria. Emerg Infisere Dette 2004; 10 (8): 1465-7.
Papa A, Maltezou H, Tsiodras S, Dalla V, Papadimitriou T, Pierroutsakos I, Kartalis G, Antoniadis A. et Tilfelle av Hemorragisk feber I Krim-Kongo I Hellas, juni 2008. Euro Surveill. 2008 August 14;13(33). pii: 18952.
Swanepoel R, Gill DE, Shepherd AJ, Leman PA, Mynhardt JH, Harvey S. den kliniske patologien Til Krim-Kongo hemorragisk feber. Rev Infisere Dis 1989; 11 Suppl 4: S794-800.
Whitehouse CA. Krim-Kongo hemorragisk feber. Antiviral res 2004; 64 (3): 145-60.