Factsheet about Crimea-Congo haemorrhagic fever

Patogeno

Crimea-Congo haemorrhagic fever (CCHF) è un’infezione virale descritta in alcune parti dell’Africa, Asia, Europa sud-orientale e Medio Oriente. L’agente eziologico, il virus CCHF, appartiene al genere Nairovirus della famiglia Bunyaviridae. Causa una grave malattia negli esseri umani con un rischio di trasmissione nosocomiale e un alto tasso di mortalità. L’insorgenza della malattia è legata alla distribuzione geografica dei vettori di zecche dure, principalmente del genere Hyalomma. Il nome del virus è legato al riconoscimento clinico della malattia in Crimea nel 1944 e al primo isolamento del virus in Congo nel 1956. La gamma geografica del virus CCHF è nota per essere il più esteso dei virus tickborne rilevanti per la salute umana. In Europa sono stati segnalati casi in Albania, Bulgaria, Kosovo, Turchia e nell’ex Unione Sovietica. In Grecia, il primo caso umano di infezione da CCHF è stato segnalato nell’estate del 2008. Il primo caso umano di infezione da CCHF è stato segnalato in Grecia nel giugno 2008. In Spagna il primo caso umano di infezione da CCHF è stato riportato nell’agosto 2016 e ha portato a un caso di infezione nosocomiale.

Caratteristiche cliniche e sequele

Dopo un periodo di incubazione, di solito di 3-7 giorni (da 1 a 13 giorni), la malattia è caratterizzata da un esordio improvviso di malattia febbrile con cefalea, mialgia, mal di schiena, dolori articolari e addominali e vomito. Ciò è seguita frequentemente dalle manifestazioni emorragiche che possono variare dalle petecchie alle ecchimosi che compaiono sulle membrane mucose e sulla pelle; i siti di sanguinamento più comuni sono il naso, il sistema gastrointestinale, l’utero e le vie urinarie e respiratorie. Può verificarsi epatite necrotica. Grandi ecchimosi e sanguinamento incontrollato dai siti di venipuntura sono caratteristiche comuni. Il periodo di convalescenza inizia nei sopravvissuti circa 10-20 giorni dopo l’inizio della malattia. La durata del periodo di incubazione varia a seconda di diversi fattori, tra cui la dose virale e la via di esposizione, ed è spesso più breve dopo l’infezione nosocomiale.

Trasmissione

Serbatoio

Il virus della febbre emorragica della Crimea-Congo circola in un ciclo enzootico silenzioso della zecca-vertebrato-zecca e non vi sono prove che il virus causi malattie negli animali. Le zecche del genere Hyalomma sono i principali vettori del virus CCHF; Hyalomma marginatum è il vettore principale per CCHF nell’Europa meridionale; il virus è stato identificato anche in Hyalomma lusitanicum in Spagna. Lepri e ricci fungono da ospiti amplificanti per gli stadi immaturi delle zecche. Animali domestici (bovini, caprini, ovini, ecc.) sono i soliti ospiti per le zecche adulte. Gli esseri umani non sono gli ospiti preferiti delle zecche Hyalomma e sono raramente morsi rispetto al bestiame. Una volta infettati, le zecche possono trasmettere il virus CCHF per tutta la loro vita. Nell’emisfero settentrionale, Hyalomma marginatum è solitamente attivato dall’aumento della temperatura in primavera (inizio aprile), e gli stadi immaturi sono attivi in estate tra maggio e settembre.

Modalità di trasmissione

Gli esseri umani vengono infettati attraverso morsi di zecche infette o per contatto con sangue infetto o altri tessuti animali. La trasmissione nosocomiale può avvenire attraverso il contatto diretto con sangue o fluidi corporei infetti o attraverso apparecchiature mediche o forniture contaminate.

Gruppi a rischio

I principali gruppi a rischio sono gli agricoltori, i veterinari e i lavoratori dei macelli nelle aree endemiche, e la maggior parte dei casi colpiti riguarda l’agricoltura e/o la zootecnia domestica e le attività di macellazione. La carne stessa non è la fonte di infezione perché il virus è inattivato dall’acidificazione post-macellazione del tessuto e il virus CCHF non sopravvive alla cottura. Gli operatori sanitari sono il secondo gruppo più colpito quando allattano pazienti affetti da CCHF con gravi emorragie ed emorragie in ambiente ospedaliero senza rigide procedure di cura a barriera. Le attività all’aperto nelle aree endemiche sono un fattore di rischio per l’esposizione alle zecche.

Metodi di prevenzione

La prevenzione e il controllo dell’infezione da CCHF si ottengono evitando o minimizzando l’esposizione a zecche infette utilizzando repellenti per zecche. Si raccomanda l’uso di indumenti protettivi e la rimozione precoce e corretta delle zecche. Poiché i casi nosocomiali di CCHF sono abbastanza comuni e spesso provocano un’elevata mortalità, devono essere prese severe precauzioni universali, inclusa l’assistenza infermieristica di barriera, con i casi ospedalizzati, come con altre febbri emorragiche. Un vaccino derivato dal cervello di topo inattivato è utilizzato in Bulgaria, ma non è ampiamente disponibile, e l’efficienza e la sicurezza devono essere rivalutati, così come l’immunoglobulina umana specifica utilizzata per la profilassi post-esposizione. Nelle aree endemiche, una misura del controllo delle zecche è stata ottenuta mediante la sanificazione ambientale degli habitat del sottobosco. Gli acaricidi possono essere utili sugli animali domestici per controllare le zecche infette dal virus CCHF se usati 10-14 giorni prima della macellazione o per esportare animali da regioni enzootiche.

Diagnosi

La diagnosi diretta di CCHF viene effettuata rilevando il genoma virale mediante RT-PCR fino a 10-15 giorni dopo l’insorgenza della malattia. La rilevazione sierologica di anticorpi IgM specifici può essere effettuata a partire dal quinto giorno. Crimea-Congo febbre emorragica IgG sieroconversione o aumento del titolo di quattro volte può aiutare la diagnosi, ma è in ritardo. Poiché il CCHF è considerato un agente patogeno altamente pericoloso, la spedizione e la manipolazione dei campioni richiedono protocolli specifici.

Gestione e trattamento

Poiché non esiste una terapia antivirale specifica convalidata per CCHF, il trattamento si basa su cure di supporto, inclusa la somministrazione di trombociti, plasma fresco congelato e preparati di eritrociti. Ribavirina per via orale o endovenosa è stata utilizzata con successo riportato, sebbene senza benefici confermati. Il valore delle immunoglobuline umane dei pazienti recuperati per il trattamento deve essere rivalutato.

Aree chiave di incertezza

La comprensione del ciclo di trasmissione del virus CCHF richiede ulteriori indagini sul campo, specialmente in Europa. Manca una standardizzazione delle definizioni dei casi, delle procedure diagnostiche di laboratorio, della segnalazione e della documentazione della malattia. Il trattamento con ribavirina è raccomandato dall’Organizzazione mondiale della Sanità, ma mentre molti rapporti indicano che il farmaco può essere utile, la reale efficacia richiederebbe una valutazione aggiuntiva. Non esiste un vaccino umano sicuro ed efficace e non esiste un modello animale per testare nuovi farmaci e / o vaccini.

Nota: Le informazioni contenute in questa scheda informativa sono intese a fini di informazione generale e non devono essere utilizzate come sostituti delle competenze e del giudizio individuali degli operatori sanitari.

Burt FJ, Leman PA, Smith JF, Swanepoel R. L’uso di una reazione a catena inversa della trascrizione-polimerasi per la rilevazione dell’acido nucleico virale nella diagnosi di febbre emorragica Crimea-Congo. J Metodi Virol 1998;70(2):129-37.

Drosten C, Minnak D, Emmerich P, Schmitz H, Reinicke T. Febbre emorragica Crimea-Congo in Kosovo. J Clin Microbiol 2002;40(3):1122-3.

Duh D, Saksida A, Petrovec M et al. Carica virale come predittore dell’esito della febbre emorragica di Crimea-Congo. Emerg Infect Dis 2007;13 (11): 1769-72.

Ergonul O. Trattamento dell’emorragia di Crimea-Congo.febbre. Antivirale Res 2007.

Ergonul O, Whitehouse CA, eds. Febbre emorragica Crimea-Congo: una prospettiva globale. Dordrecht: Springer; 2007.

Estrada-Pena A, Zatansever Z, Gargili A et al. Modellazione della distribuzione spaziale dei focolai di febbre emorragica Crimea-Congo in Turchia. Vector Borne Zoonotic Dis 2007;7(4):667-78.

Hoogstraal H. L’epidemiologia della febbre emorragica di Crimea-Congo trasmessa da zecche in Asia, Europa e Africa. J Med Entomol 1979;15(4):307-417.

Huggins JW. Prospettive per il trattamento delle febbri emorragiche virali con ribavirina, un farmaco antivirale ad ampio spettro. Rev Infect Dis 1989;11 Suppl 4: S750-61.

Palomar AM al. Virus della febbre emorragica della Crimea-Congo nelle zecche, Europa sud-occidentale, 2010. Emerg Infect Dis 2012, 18,1

Papa A, Christova I, Papadimitriou E, Antoniadis A. Febbre emorragica Crimea-Congo in Bulgaria. Emerg Infect Dis 2004;10 (8): 1465-7.

Papa A, Maltezou H, Tsiodras S, Dalla V, Papadimitriou T, Pierroutsakos I, Kartalis G, Antoniadis A. Un caso di febbre emorragica crimea-Congo in Grecia, giugno 2008. Euro Surveill. 2008 Agosto 14;13(33). pii: 18952.

Swanepoel R, Gill DE, Shepherd AJ, Leman PA, Mynhardt JH, Harvey S. La patologia clinica della febbre emorragica di Crimea-Congo. Rev Infect Dis 1989;11 Suppl 4: S794–800.

Whitehouse CA. Febbre emorragica di Crimea-Congo. Antivirale res 2004;64(3):145-60.

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