Monoaminooksydaza-hamowanie i związana z tym aktywność przeciwutleniająca w ekstraktach roślinnych o potencjalnym działaniu przeciwdepresyjnym

Streszczenie

monoaminooksydaza (MAO) katalizuje oksydacyjną deaminację amin i neuroprzekaźników i bierze udział w zaburzeniach nastroju, depresji, stresie oksydacyjnym i niepożądanych reakcjach farmakologicznych. Praca ta bada hamowanie ludzkiego MAO-A przez Hypericum perforatum, Peganum harmala i Lepidium meyenii, które według doniesień poprawiają i wpływają na nastrój i warunki psychiczne. Następnie aktywność przeciwutleniająca związana z hamowaniem MAO jest oznaczana w ekstraktach roślinnych po raz pierwszy. H. perforatum hamowało ludzkie MAO-A, a ekstrakty z kwiatów dawały najwyższe hamowanie (IC50 63,6 µg/mL). Ekstrakty roślinne analizowano za pomocą HPLC-Dad-MS i zawierały pseudohiperycynę, hiperycynę, hiperforynę, adhyperforynę, hiperfirynę i flawonoidy. Hyperforin nie hamował ludzkiego MAO-A, A hiperycyna była słabym inhibitorem tego izoenzymu. Kwercetyna i flawonoidy znacząco przyczyniły się do hamowania MAO-A. P. ekstrakty z nasion harmala silnie hamowały MAO-A (IC50 49,9 µg / l), będąc tysiąc razy silniejszym niż ekstrakty H. perforatum ze względu na zawartość alkaloidów β-karbolinowych (harmaliny i harminy). Ekstrakty z korzenia L. meyenii (maca) nie hamują MAO – A. rośliny te mogą wywierać działanie ochronne związane z działaniem przeciwutleniającym. Wyniki tej pracy pokazują, że ekstrakty P. harmala i H. perforatum wykazują aktywność przeciwutleniającą związaną z hamowaniem MAO (tj. mniejszą produkcją H2O2).

1. Wprowadzenie

enzym monoaminooksydaza (MAO) metabolizuje ksenobiotyczne i endogenne aminy i neuroprzekaźniki, w tym serotoninę, dopaminę, noradrenalinę, tyraminę, tryptaminę i neurotoksynę MPTP . Występuje jako dwa izoenzymy, MAO-A i MAO-B, które odgrywają ważną rolę w ośrodkowym układzie nerwowym (OUN) i narządach obwodowych. MAO-B bierze udział w chorobach neurodegeneracyjnych, a MAO-A w stanach psychicznych i depresji. Inhibitory MAO-B są użyteczne jako neuroprotektanty, podczas gdy inhibitory MAO-A są skutecznymi lekami przeciwdepresyjnymi, chociaż ich stosowanie może wywoływać działania niepożądane (np. przełom nadciśnieniowy w żywności zawierającej tyraminę) . Z drugiej strony utlenianie amin biogennych i neuroprzekaźników przez enzymy MAO wytwarza nadtlenek wodoru (H2O2), rodniki tlenowe i aldehydy, które są czynnikami ryzyka uszkodzenia oksydacyjnego komórek. Dlatego też hamowanie MAO może skutkować ochroną przed stresem oksydacyjnym i neurotoksynami . Ostatnie badania wykazały, że ekstrakty roślinne i spożywcze mogą hamować enzymy MAO, powodując wyżej wymienione efekty biologiczne . Z drugiej strony, w wyniku hamowania MAO, produkty te mogą być zaangażowane w niepożądane interakcje z innymi preparatami ziołowymi, żywnością lub lekami .

Hypericum perforatum L. (rodzina Hypericaceae) (dziurawiec) jest szeroko stosowany w celach zdrowotnych, a ich produkty są dostępne w handlu jako zioła, nutraceutyki, herbaty, nalewki, soki, oleiste Maceraty, fitofarmaceutyki oraz dodatki do żywności i suplementy . H. perforatum jest popularny w leczeniu łagodnej i umiarkowanej depresji . Może powodować niepożądane interakcje farmakologiczne z innymi ziołami, lekami lub pokarmami . Jego zdolność do łagodzenia i poprawy zaburzeń nastroju i depresji przypisuje się związkom aktywnym, które wykazują właściwości przeciwdepresyjne . Najbardziej akceptowanym mechanizmem działania jest hamowanie wychwytu zwrotnego monoaminy, ale mogą być zaangażowane dodatkowe mechanizmy, w tym hamowanie oksydazy monoaminowej i działanie synergiczne . Peganum harmala (Rodzina Zygophyllaceae) i Lepidium meyenii (rodzina Brassicaceae) (maca) są roślinami o działaniu OUN i potencjalnym działaniu przeciwdepresyjnym . P. harmala, pochodzący z regionu Morza Śródziemnego i Azji i rozszerzony na obszary Ameryki Północnej, jest stosowany jako wielofunkcyjny środek leczniczy, w tym zaburzenia OUN. Preparaty tej rośliny mogą wywoływać niekorzystne interakcje farmakologiczne . L. meyenii jest jadalną rośliną z centralnych Andów, której korzenie są używane jako energetyzator żywności i nutraceutyk w celu poprawy warunków fizycznych i psychicznych oraz płodności . Celem tej pracy było zbadanie hamowania ludzkiego MAO – a przez ekstrakty H. perforatum, P. harmala i L. meyenii (maca), a także przez ich aktywne składniki, które zostały zidentyfikowane i przeanalizowane przez HPLC-Dad-MS, a następnie ocena aktywności przeciwutleniającej, która jest szczególnie związana z hamowaniem MAO. Ta specyficzna aktywność przeciwutleniająca jest określana po raz pierwszy w ekstraktach roślinnych.

2. Materiały i metody

rośliny Hypericum perforatum L. zebrane w Ciudad Real (Hiszpania) suszono i rozdzielano na części: kwiaty; górne nadziemne części rośliny, w tym rozgałęzione łodygi i liście, ale bez kwiatów; oraz główne łodygi (centralne i dolne) i korzenie. Zostały one zmielone i proszek używany do przygotowania próbki. Komercyjne zioła i suplementy ziołowe (kapsułki i tabletki) H. perforatum były również kupowane w lokalnych sklepach ziołowych. Rośliny i nasiona Peganum harmala L. zebrano w Toledo (Hiszpania). Lepidium meyenii (maca) zarówno w postaci proszku, jak i komercyjnych tabletek otrzymywano z Peru i lokalnych sklepów. Hypericin standard (>95% purity by HPLC) from HWI Analytik GMBH pharma solutions, hyperforin dicyclohexylammonium salt, quercetin, harmaline, harmine, catalase, clorgyline, 3,3′,5,5′-tetramethylbenzidine (TMB), and horseradish peroxidase (HRP) type II were purchased from Sigma-Aldrich.

2.1. Sample Preparation of Plant Extracts

Samples containing H. perforatum (i.e., plant parts, herbal preparation, capsules, or tablets) (500 mg) were homogenized in 10 mL of water/methanol (1 : 1) przy użyciu homogenizatora Ultra Turrax wirowano przy 10000 obr. / min przez 10 min i zebrano supernatant. Proces powtórzono dwukrotnie z pozostałością i trzema frakcjami supernatantu zebranymi, zmieszanymi i przeanalizowanymi za pomocą HPLC, jak wspomniano poniżej. Po trzech kolejnych ekstrakcjach odzyskiwanie hiperycyny i pseudohiperycyny było wyższe niż 97%. Próbki nasion L. meyenii (maca) (500 mg) i P. harmala (500 mg) homogenizowano odpowiednio w 10 mL wody / metanol (1 : 1) lub 10 mL 0,6 M kwasu nadchlorowego: metanol ( 1 : 1) przy użyciu homogenizatora Ultra Turrax wirowano przy 10000 obr. / min przez 10 min i zebrano supernatant. Proces ten powtórzono dwa razy z pozostałością, a zebrane supernatanty zmieszano i przeanalizowano za pomocą HPLC, jak wspomniano poniżej.

2.2. RP-HPLC Analiza ekstraktów roślinnych

analizę ekstraktów z H. perforatum przeprowadzono metodą RP-HPLC z matrycą diod UV i detekcją fluorescencji przy użyciu HPLC 1050 (Agilent) w połączeniu z detektorem 1100 Diode array (Dad) (Agilent) i detektorem fluorescencji 1046a. A 150 3,9 mm, 4 µm, do separacji użyto kolumny Nova-pak C18 (wody). Warunki chromatograficzne to 50 mM bufor fosforanu amonu (pH 3) (bufor A) i 20% a w acetonitrylu (bufor B). Gradient zaprogramowano od 0% (100% A) do 32% B w 8 min i 100% B w 10 min. Natężenie przepływu wynosiło 1 mL / min, temperatura kolumny wynosiła 40°C, a objętość wtrysku 20 µL. Detekcję hiperycyny przeprowadzono przez absorbancję przy 590 nm i fluorescencję przy 236 nm dla wzbudzenia i 592 nm dla emisji. Stężenie hiperycyny oznaczano na podstawie krzywej kalibracyjnej odpowiedzi (absorbancja przy 590 nm) w porównaniu ze stężeniem roztworami otrzymanymi w laboratorium ze wzorca hiperycyny. Ten sam czynnik odpowiedzi zastosowano do pseudohiperycyny, protohiperycyny i protopseudohiperycyny. Flawonoidy i glikozydy flawonoidowe analizowano przy 265 nm i 355 nm, a stężenie kwercetyny oznaczano przy 355 nm z krzywej kalibracji odpowiedzi w stosunku do stężenia. Frakcję HPLC odpowiadającą flawonoidom i glikozydom flawonoidowym (7 do 11 min) zebrano przez kolejne zastrzyki ekstraktu H. perforatum (zioła) i, po odparowaniu w próżni, rozpuszczono w 30% metanolu i zastosowano do hamowania MAO-A. Flloroglukinole (hyperforin, adhyperforin, hyperfirin i adhyperfirin) analizowano przy 280 nm przy użyciu tej samej kolumny (Nova-pak C18) i w warunkach, ale pod elucją izokratyczną z 20% buforu fosforanu amonu 50 mM, PH 3 i 80% acetonitrylu. Stężenie tych związków oznaczono na podstawie krzywej kalibracyjnej wzorca hyperforin. Analizę alkaloidów β-karbolinowych u P. harmala i L. meyenii przeprowadzono zgodnie z wcześniejszymi opisami .

2.3. Identyfikacja za pomocą spektrometrii mas HPLC-ESI

identyfikacja związków w ekstraktach H. perforatum została przeprowadzona za pomocą HPLC-MS (electrospray-negative ion mode) przy użyciu serii 1200 HPLC-DAD sprzężonej z 6110 quadrupole-MS (Agilent). Separację chromatograficzną przeprowadzono na 150 kolumnach 2,1 mm i.D. zorbax SB-C18 (5 µm) (Agilent Technologies). Warunki chromatograficzne były eluent a: kwas mrówkowy (0,1%); B: kwas mrówkowy (0,1%) w acetonitrylu; gradient: 0% do 70% B w 8 min i 100% B w 10 min, natężenie przepływu: 0,3 mL/min; : 40°C; Zakres masy: 50-700 u i napięcie stożka: 150 V. do identyfikacji floroglucynoli (np. hyperforin), separację przeprowadzono przy użyciu Nova-pak C18 (4 µm) kolumna z tymi samymi Eluentami i elucją izokratyczną (eluent a, 20% i eluent B, 80%) przy natężeniu przepływu 0,7 ml/min i widmach masowych rejestrowanych w jonizacji ujemnej i dodatniej. Identyfikacji związków dokonano na podstawie widm masowych, widm UV-vis (DAD) pików chromatograficznych oraz koelucji wzorcami. β-karboliny u P. harmala i L. meyenii zostały zidentyfikowane jako wcześniej opisane .

2.4. Testy hamowania monoaminooksydazy (MAO-A)

testy MAO przeprowadzono jak gdzie indziej . Krótko mówiąc, frakcje białek błonowych zawierające MAO-A (BD-Gentest) rozcieńczono do pożądanego stężenia w buforze fosforanowo-potasowym 100 mM (pH 7,4). 0, 2 mL mieszaniny reakcyjnej zawierającej 0, 01 mg/mL białka i 0.25 mM kynuraminę w 100 mM fosforanie potasu (pH 7,4) inkubowano w temperaturze 37 ° C przez 40 minut. Po inkubacji reakcję zatrzymano przez dodanie 2 N NaOH (75 µL), następnie dodano 70% HClO4 (25 µL), a próbkę odwirowano (10000) przez 10 minut. Supernatant (20 µL) wstrzyknięto do HPLC i produkt deaminacji kynuraminy (tj. 4-hydroksychinoliny) powstałej podczas reakcji enzymatycznej, oznaczonej detekcją macierzy diod RP-HPLC przy 320 nm. W celu obliczenia stężenia 4-hydroksychinoliny skonstruowano krzywą odpowiedzi pola względem stężenia. W celu przeprowadzenia testów hamowania MAO, porcje ekstraktów z roślin lub preparatów handlowych lub zamiast nich czystych związków wygodnie rozcieńczano i dodawano do mieszanin reakcyjnych zawierających kynuraminę (0,25 mM) i Mao-a (0,01 mg/mL białka) w buforze fosforanowo-potasowym 100 mM (pH 7,4), z reakcją enzymatyczną i analizą przeprowadzoną jak wyżej, i porównywano z odpowiednimi kontrolami zawierającymi rozpuszczalnik. Jako pozytywną kontrolę hamowania zastosowano standardowy inhibitor klorgylinę (>90% hamowania przy 2,5 µM). Inkubacje przeprowadzono co najmniej w dwóch egzemplarzach z różnych eksperymentów, a wartości IC50 obliczono przy użyciu GraphPad Prism 4.0.

2.5. Oznaczanie aktywności przeciwutleniającej związanej z hamowaniem monoaminooksydazy (MAO)

testy (0,2 mL) mieszanin reakcyjnych w buforze fosforanowo-potasowym 70 mM (pH 7,4), zawierającym 0,025 mg/mL białka MAO-a i 0,25 mM kynuraminy, inkubowano w temperaturze 37°C przez 40 minut w nieobecności (testy kontrolne) lub w obecności ekstraktów roślinnych. Testy MAO przeprowadzono również w obecności klorgyliny (25 µM), klasycznego inhibitora MAO-a (pozytywna Kontrola hamowania) lub enzymu katalazy (100 µg/mL). Po okresie inkubacji mieszaninę reakcyjną dodano węglem aktywowanym (3,5 mg), zmieszano i przesączono (0,45 µm). Roztwór dodano 20 µL 10 mM tetrametylobenzydyny (TMB) w 40% DMSO i 20 µL peroksydazy chrzanowej (HRP) typu II (1 mg/mL), trzymano przez 5 minut i dodano 0,3 mL 0,5 m roztworu H2SO4. Absorbancję przy 450 nm mierzono w celu określenia diiminy TMB, żółtego produktu powstałego w wyniku utleniania TMB przez HRP i H2O2 wytworzonego w deaminacji oksydacyjnej katalizowanej przez MAO. Utlenianie TMB w obecności inhibitorów MAO porównano z odpowiednimi grupami kontrolnymi bez inhibitorów, a odpowiednie ślepe próby wykazały brak zakłóceń.

3. Wyniki i dyskusja

Preparaty handlowe H. perforatum hamowały ludzkie MAO-a o podobnej sile działania: wartości IC50 142,3 ± 30.6 µg/mL (preparat ziołowy), 193 ± 61 µg/mL (kapsułki) i 173 ± 29 µg/mL (tabletki) (ryc. 1(A)). Jeśli chodzi o rośliny, ekstrakty H. perforatum z kwiatów dały najwyższe zahamowanie (IC50 63,6 ± 9,4 µg/mL), a następnie łodygi i liście nadziemne (IC50 143,6 ± 16,5 µg/mL), a najniższe w ekstraktach korzeniowych (Fig. 1(b)). Ekstrakty z nadziemnych części H. perforatum analizowano metodą HPLC-DAD-ESI (electrospray-negative jonization). Wykazały one obecność dwóch głównych naftodiantronów zidentyfikowanych jako pseudohiperycyna i hiperycyna(ryc. 2 (A) I Tabela 1). Ekstrakty kwiatowe miały dwa dodatkowe związki zidentyfikowane jako protopseudohiperycyna i protohiperycyna. Fenoli i flawonoidów obfitujących w ekstrakty H. perforatum (ryc. 2 (b)). Kwas chlorogenowy i glikozydy kwercetyny rutyna, hiperozyd, izoquercytryna, miquelianina, hiperozyd acetylowy i kwercytryna, a także wolna kwercetyna i biapigenina, zostały zidentyfikowane przez HPLC-DAD (jonizacja ujemna ESI) I DAD (Tabela 1). Z drugiej strony, ekstrakty kwiatowe zawierały cztery floroglukinole (fig. 2 (c)), które zostały zidentyfikowane przez HPLC-DAD-MS (jonizacja ESI ujemna i dodatnia) i DAD jako hyperforin, adhyperforin, hyperfirin i adhyperfirin (Tabela 1). Obecność tych związków (Fig. 3) w roślinie zgadza się z innymi wynikami . Zawartość głównych składników oznaczono metodą HPLC (Tabela 2). Stężenie pseudohiperycyny było wyższe niż hiperycyna, podczas gdy protopseudohiperycyna i protohiperycyna były związkami mniejszymi (0,4 µg/mg protopseudohiperycyny i 0.17 µg/mg protohiperycyny wykryto w kwiatach). W roślinie największą zawartość hiperycyny stwierdzono w kwiatach, przy czym znacznie niski poziom wykryto w łodygach i brak w korzeniach. Hyperforin był bardzo bogaty w kwiaty (27,2 µg / mg), podczas gdy stężenie w preparatach komercyjnych wynosiło od 0,36 do 2,4 µg/mg. W kwiatach pojawiła się również adhyperforina (1,4 ± 0,07 µg/mg), hyperfiryna (4,2 ± 0,02 µg/mg) i adhyperfiryna (0,46 ± 0,02 µg/mg). Flawonoidy obfitują w H. perforatum i większość z nich to glikozydy kwercetyny (fig. 2 (b)), których obecność była znacznie większa w kwiatach niż w innych częściach rośliny. Zawartość wolnej kwercetyny w kwiatach wynosiła 2,0 µg/mg, natomiast w preparatach komercyjnych oznaczono zawartość 6,7 µg/mg.

związki ESI-neg. ion UV max (DAD)
Naphthodianthrones
Pseudohypericin 519 547, 590
Hypericin 503 547, 590
Protopseudohypericin 521 370, 539
Protohypericin 505 370, 539
Phenolic comp.
kwas chlorogenowy акід 353 324
Ruth 609 256, 355
w Хыперосе 463 256, 355
Ісоқұркітрі 463 256, 355
Мікелінін 477 256, 355
Acetyl хіперосіда 505 263, 352
W. W. Pietrow. 447 255, 348
Quercetin 301 255, 369
Biapigenina 537 268, 331
Floroglucynole
467 274
481 274
535 274
549 274
związki dały również odpowiadające im (M + H)+ I (m + K)+ jony pod jonizacją ESI-dodatnią.
związki zidentyfikowane w H. perforatum.

H. perforatum próbki Pseudohiperycyna hiperycyna Hyperforin kwercetyna
roślina
łodyga (Góra)
łodyga (Centralna)
korzenie
kwiaty
zioła
kapsułki
tabletki
istotne różnice () dla związku w obrębie grupy oznaczane są różnymi literami. 1µg związku / mg tkanki roślinnej dla części roślin i ziół lub mg proszku w kapsułkach i tabletkach.
Tabela 2
zawartość (µg/mg)1 głównych składników aktywnych w próbkach H. perforatum.

(a)
(a)
(b)
(b)

(a)
(a)(b)
(b)

1
hamowanie ludzkiej oksydazy monoaminowej – a (MAO-A) przez ekstrakty preparatów handlowych H. perforatum (a) (kapsułki, ■; tabletki, ■ ; zioła,▼) i ekstrakty z różnych części rośliny (B) (kwiaty,∆; łodygi górne,◊; łodygi główne (Centralne),×; korzenie,○). Znaczące różnice () między ekstraktami w wybranym stężeniu są oznaczone różnymi literami.

(a) nm
(a) nm
(b) nm
(b) nm
(c) nm
(c) nm

(a) nm
(a) nm(b) nm
(b) nm(c) nm
(c) nm

Figure 2
HPLC chromatograms of extracts from H. perforatum flowers. (a) Detection of hypericins at 590 nm. 1: protopseudohypericin; 2: pseudohypericin; 3: protohypericin; and 4: hypericin. (b) Detection of phenols and flavonoids at 265 nm. 1: chlorogenic acid; 2: rutin; 3: hyperoside; 4: izoquercytryna; 5: miquelianina; 6: hiperozyd acetylowy; 7: kwercytryna; 8: kwercetyna; i 9: biapigenina. C) wykrywanie floroglukinoli przy 280 nm. 1: hyperfirin, 2: adhyperfirin; 3: hyperforin; i 4: adhyperforin.

3
struktury związków zidentyfikowanych w H. perforatum: hiperycyny, kwercetyny i flawonoidy kwercetyny oraz flloroglucynole (hyperforina, adhyperforina, hyperfiryna i adhyperfiryna).

hamowanie MAO-a przez H. ekstrakty z perforatum wskazują na występowanie inhibitorów. Hiperycyna, hyperforina i flawonoidy mogą przyczyniać się do tego hamowania i zostały ocenione jako inhibitory (rycina 4). Hiperycyna hamuje MAO-A (IC50 35,5 ± 2,1 µM lub 17,9 µg/mL) (Fig.4 (A)). Z stężenia w tabeli 2 wynika, że hiperycyna jest słabym czynnikiem hamującym MAO w ekstraktach z H. perforatum. Rzeczywiście, obliczona zawartość hiperycyny przy wartości IC50 w testach ekstraktu z kwiatów (tj. 63,6 µg/mL) wynosiła 0,1 µg/mL, co jest niskie w porównaniu z IC50 hiperycyny (17,9 µg/mL). Hyperforin nie hamował działania MAO – A(rycina 4 (b)). Kwercetyna hamowała ludzki MAO-a(fig. 4 (b)) o wartości IC50 11,1 ± 0,8 µM (tj. 3,36 µg/mL). Następnie kwercetyna była lepszym inhibitorem niż hiperycyna, chociaż jej moc była nadal niska, aby wyjaśnić całe hamowanie ekstraktów. Tak więc obliczona zawartość kwercetyny w IC50 w testach ekstraktu kwiatowego wynosiła 0,13 µg/mL, co jest niższe niż IC50 kwercetyny (3,4 µg / mL). Gdy frakcja odpowiadająca glikozydom kwercetyny i flawonoidom(7-11 min, fig.2 (b)) została zebrana przez RP-HPLC, hamowała ona MAO-a (90% inhibicja przy ekstrakcie 700 µg/mL), co wskazuje na udział tych związków w hamowaniu MAO w H. perforatum, prawdopodobnie przez działanie addytywne. Następnie hamowanie MAO-A może wynikać ze składników, takich jak kwercetyna i pokrewne flawonoidy (tj. glikozydy kwercetyny), które są obfite w roślinie. Ponadto mniejsze związki nie zidentyfikowane tutaj mogą również przyczyniać się do hamowania MAO, ponieważ główne związki w tabeli 2 nie wyjaśniają całkowitego hamowania.

(a)
(a)
(b)
(b)

(a)
(a)(b)
(b)

ryc. 4
hamowanie ludzkiej oksydazy monoaminowej-a (MAO-A) przez aktywne składniki H. perforatum: hiperycynę (a) i kwercetynę (■) i hyperforynę (▲) (b).

ekstrakty z nasion P. harmala silnie hamują ludzkie MAO-a(fig. 5 (A)) dające wartość IC50 49,9 ± 5,6 µg/L. Analiza chromatograficzna wykazała, że hamowanie było spowodowane obecnością alkaloidów β-karbolinowych, harmaliny i harminy, które zidentyfikowano za pomocą HPLC-Dad-MS (Fig. 5 (c)). Zawartość tych alkaloidów oznaczona w nasionach wynosiła 48,5 mg / g dla harmaliny i 40,0 mg/g dla harminy (oznacza to 2,4 ng/mL i 2,0 ng/mL, resp., do testów w IC50). Dlatego siła hamowania MAO-a przez nasiona P. harmala była 1274 razy silniejsza niż w przypadku kwiatów H. perforatum. Jak pokazano na fig. 5(b), ekstrakty z korzenia Lepidium meyenii nie hamowały ludzkiego MAO-A. L. meyenii (maca) jest popularną rośliną z Andów, której korzenie są coraz częściej wykorzystywane ze względu na swoje właściwości odżywcze i lecznicze, jak energetyzujące i poprawiające nastrój i sprawność seksualną . Wcześniejsze doniesienia wskazywały, że zawierają one alkaloidy, w tym β-karboliny, które mogą hamować MAO. Analiza ekstraktów na alkaloidy β-karbolinowe dała 25 µg/g (proszek maca) i 11,7 µg/g (kapsułki) kwasu 1-metylo-1,2,3,4-tetrahydro-β-karbolino-3-karboksylowego jako główny związek. Ta swoista β-karbolina nie jest inhibitorem MAO-A.

(a)
(a)
(b)
(b)
(c)
(c)

(a)
(a)(b)
(b)(c)
(c)

5
hamowanie ludzkiej oksydazy monoaminowej – a (MAO-A)przez ekstrakty z nasion P. harmala (a) i korzenia L. meyenii (maca) (B) (kapsułki, ▼ i proszek,■). C) chromatogram HPLC ekstraktu z nasion P. harmala, który silnie hamował wykrywanie absorbancji ludzkiej MAO-a przy 254 nm. Zidentyfikowane związki to harmalina (m/z Przy 215 (m + h)+, przy 375 nm) i harmina (m/z Przy 213 (m + h)+, przy 245 i 322 nm).

MAO wytwarza nadtlenek wodoru (H2O2), który bierze udział w uszkodzeniach komórek oksydacyjnych i stanach patologicznych . Następnie hamowanie MAO może prowadzić do specyficznych działań przeciwutleniających . W celu zbadania aktywności przeciwutleniającej związanej z hamowaniem MAO, w badaniach tych opracowano eksperymenty, które łączyły aktywność MAO-A z utlenianiem tetrametylobenzydyny (TMB) przez peroksydazę chrzanową (HRP) i H2O2 wytwarzanym podczas deaminacji oksydacyjnej katalizowanej przez MAO (Fig.6). Ekstrakty H. perforatum i P. harmala, które hamowały MAO – a, jak pokazano powyżej, znacznie zmniejszały utlenianie TMB. Natomiast ekstrakty z korzenia L. meyenii (maca), które nie hamowały MAO, miały niską aktywność przeciwutleniającą w tym teście. Klorgylina, która jest silnym inhibitorem MAO-a, znacznie zmniejszała utlenianie TMB, gdy była stosowana jako kontrola. To samo stało się z obecnością katalazy w pożywce, która usuwa H2O2 generowane przez MAO-A. Dlatego wyniki te wskazują, że ekstrakty H. perforatum i P. harmala dały specyficzne działanie przeciwutleniające związane z niższą produkcją H2O2 przez hamowanie MAO.

6
aktywność przeciwutleniająca związana z hamowaniem MAO w testach aktywności sprzęgającej MAO-A z późniejszym utlenianiem tetrametylobenzydyny (TMB) w obecności H2O2 wytworzonego w reakcji MAO i peroksydazy chrzanowej (HRP). Wykres przedstawia utlenianie TMB do diiminy (absorbancja przy 450 nm) w testach kontrolnych (100%) oraz w obecności H. perforatum (ekstrakty ziół i kwiatów, 800 µg/mL), ekstraktów z nasion P. harmala (0,8 µg / mL), L. ekstrakty z korzenia meyenii (maca) (800 µg/mL), klorgylina (standardowy inhibitor MAO-A) (25 µM) i katalaza (100 µg / mL). różnice () w stosunku do kontrolek.

H. perforatum poprawia zaburzenia nastroju i depresję . Jak pokazano tutaj, zawiera związki takie jak hyperforin, hypericyny i flawonoidy odpowiedzialne za działanie przeciwdepresyjne (ryc. Jednak specyficzny mechanizm działania przeciwdepresyjnego nie jest całkowicie poznany. Najbardziej akceptowanym mechanizmem jest hamowanie wychwytu zwrotnego monoaminy . Jednak niektóre badania sugerują połączenie mechanizmów i efektów synergicznych . P. harmala wykazuje liczne działania biologiczne i farmakologiczne. Ich nasiona są coraz częściej wykorzystywane do celów rekreacyjnych ze względu na ich działanie psychoaktywne i neuroaktywne . Hamowanie ludzkiego MAO-A jest ustalonym mechanizmem działania przeciwdepresyjnego . Zarówno nieodwracalne, jak i odwracalne inhibitory MAO-A (np. fenelzyna i moklobemid) są z powodzeniem stosowane jako leki przeciwdepresyjne. W tym badaniu ekstrakty H. perforatum hamowały ludzkie MAO-A. Jednak hamowanie to było umiarkowane. Był ponad tysiąc razy niższy niż ekstrakty nasion P. harmala. Sacher et al. donoszą, że obłożenie miejsc MAO-A w ludzkim mózgu określone przez obrazowanie PET z wiązaniem 11C-harminy (tj. ta sama β-karbolina odpowiedzialna za hamowanie MAO w P. harmala) było wysokie dla odwracalnego inhibitora MAO, takiego jak moklobemid, ale niskie dla ekstraktu H. perforatum (dziurawca zwyczajnego) . Oznacza to, że inhibitory MAO-a w H. perforatum nie wiążą się skutecznie z aktywnymi miejscami MAO-a w mózgu w przeciwieństwie do harminy β-karboliny. Inhibitory MAO-a w H. perforatum to flawonoidy, takie jak kwercetyna i ich glikozydy, a poziomy tych związków, które docierają do mózgu, mogą nie wystarczyć, aby zająć miejsca MAO-A w mózgu i hamować enzym . Natomiast inhibitorami P. harmala są alkaloidy β-karbolinowe, w tym harmina i harmalina, które mają bardzo dobrą penetrację mózgu, wiążą się z wysokim powinowactwem do miejsc MAO i wykazują działanie przeciwdepresyjne . Dlatego P. harmala mógł sobie pozwolić na działanie przeciwdepresyjne poprzez hamowanie MAO. W związku z tym interesujące może być zbadanie działania przeciwdepresyjnego H. perforatum i P. harmala samodzielnie i w połączeniu, ponieważ mają różne mechanizmy działania.

hamowanie MAO-a przez ekstrakty H. perforatum i P. harmala może przyczyniać się do innych efektów biologicznych tych roślin, takich jak działanie przeciwutleniające i niepożądane reakcje farmakologiczne. Ekstrakty z tych roślin wywierają działanie neuroprotekcyjne i przeciwzapalne związane z aktywnością przeciwutleniającą . W związku z tym, stosując nową procedurę, wyniki tych prac wykazały, że H. perforatum i P. ekstrakty harmala wykazują aktywność przeciwutleniającą związaną z hamowaniem MAO (niższa produkcja H2O2). Z drugiej strony, jednym z głównych ograniczeń w stosowaniu tych roślin jest ich potencjał do wytwarzania niepożądanych interakcji z innymi ziołami, żywności i leków . Hamowanie MAO-A może w pewnych okolicznościach wywoływać działania niepożądane .

4. Wnioski

ekstrakty z H. perforatum hamowały ludzkie MAO-A, a ekstrakty z kwiatów były najsilniejszymi inhibitorami. Były badane przez HPLC-DAD-MS i zawierały pseudohiperycynę, hiperycynę, hiperforynę, adhyperforynę, hiperfirynę i flawonoidy. Najwyższa zawartość tych związków pojawiła się w kwiatach. Hiperycyna była słabym inhibitorem MAO-A; hyperforina nie hamowała enzymu, a kwercetyna była umiarkowanym inhibitorem. Frakcja glikozydów kwercetyny i flawonoidów przyczyniła się do zahamowania MAO. Ekstrakty z nasion P. harmala silnie hamowały MAO-A, a ich siła hamowania była ponad tysiąc razy wyższa niż ekstraktów H. perforatum ze względu na zawartość alkaloidów harmaliny i harminy. L. ekstrakty z korzenia meyenii (maca) nie hamowały MAO-A. hamowanie MAO-a może nie wyjaśniać całego działania OUN przypisywanego H. perforatum, ale oczekuje się, że przyczyni się do tych działań w P. harmala. Rośliny te wywierają działanie przeciwutleniające. Dzięki zastosowaniu nowej metody praca ta udowodniła, że ekstrakty P. harmala i H. perforatum wykazują aktywność przeciwutleniającą związaną z hamowaniem MAO.

autorzy nie deklarują żadnych konkurencyjnych interesów finansowych.

podziękowania

autorzy są wdzięczni MINECO-FEDER (SAF2015-66690-R I SAF2015-68580-C2-R) i CSIC (Hiszpania) (projekt 200470e658) za wsparcie tej pracy. Autorzy są również wdzięczni Martie Aguilar Preiss za pomoc techniczną i Dr. V. Aránowi za pomoc w identyfikacji i selekcji roślin.

You might also like

Dodaj komentarz

Twój adres e-mail nie zostanie opublikowany.